1.以沉淀形式保存在高浓度的硫酸铵中。
2.添加50%甘油冷冻，尤其适用于酶类。
3.如果样品要用于生物学检测，避免使用防腐剂。在体内实验中不能添加防腐剂，而应当将样品分装成小份冷冻。
4.可使用无菌滤器以延长保存时间。
5.添加稳定剂，如甘油（5-20%）、血清白蛋白（10mg/ml）、配基（浓度取决于活性蛋白的浓度）以帮助维持生物活性。
6.避免反复冻融或冻干重溶解过程，这样很可能会降低生物活性。
7.一些冷沉淀蛋白会在4度沉淀出来，包括一些小鼠IgG3亚族的抗体，不能保存在4度冰箱中，可添加防腐剂保存在室温中。
V/V就是volume per volume，容积比例例如100ML溶液，50ML为甘油
用100ml水和100ml的丙三醇混合配置的然后高压灭菌1:1(v/v)
pro在缓冲溶液里放入-20或-80保存，但是蛋白质溶液最好不要保存，现配现用，因为蛋白质溶液的保存期限不长，如果变质影响实验效果
你好，蛋白保存是个比较棘手的问题，就我的理解来讲：1.
蛋白的保存很大程度上依赖于蛋白本身的结构稳定性，其次和保存条件优化有关；
2.
尽量避免蛋白的反复冻融，这会对蛋白的结构和活性造成破坏；
像你说到的第二天就要用，根本没必要放在-70℃低温，一般来讲，尽量安排好实验周期，在3天内用完蛋白（4℃保存）是理想条件；
3.
如果不得不保存，要分装，留下马上就用的放在4℃，其他放低温，每次取1只；如果有冻干机，冻成干粉再放到-70比液态低温更好，再溶解也会好很多（但很多蛋白还是会有失活问题）；
4.
关于保护剂，如果蛋白稳定性不强，一般会加甘油（5%-50%浓度）和叠氮钠（抑菌），这样一来，取出时，不得不做透析或脱盐，以去除甘油和叠氮钠，会带来损失，相比而言，冻干粉就好很多；
5.
关于咪唑的去除问题，如果确信咪唑的存在对你后续的实验没影响，可以不去；但实际上，很多实验都会受到咪唑的影响，或者说一旦实验有疑问，你就无法判定是否是因为咪唑，所以建议你去咪唑，去咪唑的方式包括：透析、浓缩管离心、脱盐柱。个人认为，去除效率、最省时、蛋白回收率最高的办法是脱盐柱。
我目前想到的就这么多，欢迎继续讨论，祝实验顺利！
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