这个不同温度持续时间，以实际逆转录反应不同而有所差异。
RNA提取步骤及注意事项（仅供参考）：
实验步骤如下：
1.取50—100mg的组织,加入1ml Trizol试剂，用匀浆器打匀(Trizol先放于冰上)。
2.将匀浆室温放置5min。
3.加入200μl氯仿,剧烈震荡混匀30s，冰上静置3min。
4.12000rpm，4℃离心15min。
5.将上清液小心转移到新的1.5ml离心管中（取400μl），加入等量体积的异丙醇，上下颠倒几次混匀，室温下放置15min。（此步中注意：不要吸取任何中间层物质，宁缺勿烂。）
6.12000rpm，4℃离心15min。
7.小心移去上清液，防止RNA沉淀丢失。
8.用70%乙醇（DEPC处理的水配制）洗涤1次，加入700μl乙醇，将RNA沉淀弹起，漂洗。（此时RNA是不溶解的）
9.8000rpm，室温离心10min。
10.尽可能彻底地吸走上清，防止RNA沉淀丢失。
11.真空离心干燥3—5分钟，或放在室温下使乙醇完全挥发掉。
12.沉淀用30μl DEPC-H2O溶解。如发现沉淀难溶，68℃处理10min。
13.RNA检测
(1)测定样品在260nm和280nm的吸光值按1OD=40μg/ml RNA计算RNA的产量。
OD260/OD280在1.8-2.0。
(2)进行甲醛变性琼脂糖凝胶电泳,确定RNA的完整性和污染情况。
注意事项：
1.获得RNA效率低有一下原因
a:样品裂解或匀浆处理不彻底
b:最后得到地RNA沉淀未完全溶解
2.A260/A280＜1.65原因
a:检测吸光度时，RNA样品不是溶于TE，而是溶于水。低离子浓度和低PH条件下，A280值会较高
b:样品匀浆时加地试剂量太少
c:匀浆后样品未在室温放置2分钟
d:水相中混有有机相
e:最后得到地RNA沉淀未完全溶解
3.RNA降解原因
a:组织取出后没有马上处理或冷冻
b:样品或提取地RNA沉淀保存于-5--20度，未在-60--70度保存
c:细胞在胰酶处理时被破坏
d:溶液或离心管未经RBase去处理
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