如何正确采集血培养标本

如何正确采集血培养标本

采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109 /L,特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109 /L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。下面是我为大家带来的如何正确采集血培养标本的知识，欢迎阅读。

什么情况下应该采集血培养?

采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109 /L,特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109 /L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。当然不能除外感染，需明确病原菌时，也要采集血培养。

采集血培养标本有最佳时间吗?

血培养标本是有最佳采集时间的，尽可能在患者寒战开始时、高热高峰前30-60分钟内采血，另外在患者接受抗生素治疗前采血，但如果患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前取血。

为什么使用需氧和厌氧瓶并采集两套呢?

需氧瓶、厌氧瓶标本同时取有助于提高阳性率，细菌包括需氧菌、厌氧菌和兼性厌氧菌。兼性厌氧菌不论在有氧或无氧环境中都能生长，但以无氧时生长较好，大多数病原菌属于此类。因此，建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶，有利于微需氧菌和厌氧菌的检出，但如果不能满足推荐的'采血量时，应首先满足需氧瓶。成人患者一套血培养标本需取血20ml,需氧瓶、厌氧瓶各10ml，一套标本的检测灵敏度是73.2%，两套标本的检测灵敏度是93.9%，可见采集两套标本可以明显提高检测灵敏度，所以取两套标本还是很有必要的。值得注意的是，如果取两套标本要分别在两个穿刺点采血。

怎样规范的采集血培养标本呢?

第一步：手卫生。用皂液和流动水或含酒精的快速手消毒剂进行手卫生。

第二步：消毒瓶塞。用酒精纱布消毒培养瓶塞，充分待干。

第三步：皮肤消毒。范围直径不小于5厘米，消毒后不可再用手接触。

① 先用70%-80%乙醇消毒不少于30秒。

②再用1%-2%碘酊消毒30秒或10%碘伏消毒60秒。

③ 再用70%-80%乙醇脱碘。

注意：对碘过敏的患者用70%-80%乙醇消毒2遍作用时间各3分钟，等酒精挥发干燥后采血。

第四步：采血。取血后不要更换针头直接注入血培养瓶。如果血量充足：先注厌氧瓶，后注需氧瓶，如果血量不足：优先注入需氧瓶，剩余注入厌氧瓶，因为真菌、绿脓杆菌、窄食单胞菌多长在需氧瓶内。

第五步：混匀。血培养标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固，不要大力摇晃。在每个培养瓶上分别标记采血部位和采血时间，注明是导管血还是外周血。

第六步：同法选择对侧穿刺部位采集第二套标本。

第七部：送检。血培养标本尽快送到实验室，任何的时间延误都会延迟或阻止检测细菌的生长。

注意：标本应从静脉取血，不宜从静脉导管或静脉留置口取血。若导管设施取血，不要弃去初段血，不用抗凝剂冲洗，必须同时静脉取血，以求对比和解释。不推荐使用真空采血针(蝴蝶针)将静脉血直接入瓶。不主张换针头入瓶。有血的培养瓶不可放入冰箱和冻箱保存。

未使用的血培养瓶在室温保存，被接种后不得冷藏或冷冻。

采集血培养标本需要严格无菌操作，但采集、送检、接种过程等仍然有可能有不可避免的污染，会不会有一些污染菌呢?

在多次血培养中单次培养下列细菌阳性，可认为是污染菌，包括凝固酶阴性葡萄球菌、棒状杆菌、微球菌、丙酸杆菌、芽孢杆菌。如多次血培养多次阳性，可能为条件致病菌，需要结合临床进行分析。

对于成人及青少年患者采集血培养标本的总体建议：

1. 血流感染、脑膜炎、骨髓炎、关节炎、肺炎患者，在治疗前于不同部位采血2套或3套，同一部位需间隔30min-1小时，每套20ml,需氧、厌氧各10ml。

2. 急性感染性心内膜炎患者，治疗前30分钟内采血3套。

3. 亚急性感染性心内膜炎患者，治疗前第一天采血2-3套，间隔30-60分钟，如结果为阴性，第二天和第三天再抽取血培养，24小时内采血不超过4套。

4. 导管相关性血流感染患者，采集2套血培养，1套从怀疑存在感染的导管获得，一套从外周获得，两套血同时采集。可先取外周血，5分钟内完成对导管血的采集。拔除导管时送导管尖端培养，并采集血培养标本。

关于血液标本采集、运送及注意事项可以分为如下五个方面：

一、血培养指征

患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎留置中心静脉导管超过72h感染性心内膜炎骨髓炎有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。

二、采血时机

一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后，以寒战、发热时采集为宜。

三、采血流程

(一)消毒

1、培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。

2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30s以上)穿刺采血。

(二)静脉穿刺和培养瓶接种

成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内的空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注入厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。

(三)注意事项

1、检验单需要注明抗菌药物使用的情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。

2、采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。

3、采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。

4、细菌性心内膜炎：在24h内取血3次，每次间隔不少于30min必要时次日再做血培养2次。

5、采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血8～10ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。

四、运送要求

1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h内。如果不能及时送检，宜置于室温环境。血培养瓶送到检验科放入培养箱前，不应暂存于冰箱内。

2、送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。

3、安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。

五、报告要求

(一)紧急口头(电话)报告

血培养出现阳性报警时立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头(电话)报告。口头报告包含以下内容，并记录在案。

(1)报告者全名(或工号)

(2)报告的时间

(3)所联系医生的全名(或工号)

(4)报告镜检结果并强调其紧急价值

(5)确认临床医生收到报告并复述结果。

(二)最终结果(书面)报告

(1)无菌生长(培养5天无需氧菌和厌氧菌生长)

(2)阳性培养结果(最终鉴定结果、最终药敏结果)。

(三)其他报告和记录

1、标本被拒收时，需即刻通知临床立即重新采血，并记录在案。

2、最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需立即通知临床，同时必须在书面报告上提供正确的结果，注明变更的内容。

3、其他需临床注意的事项的记录，如：采血量不足、标本放置时间长、标本采集份数不够等信息。

以上是对于临床中血液标本采集、运送及注意事项的总结，在面试中常会涉及，希望给学员在复习过程中提供帮助

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