冰冻切片的制作步骤及每个步骤的要求和作用?

冰冻切片的制作步骤及每个步骤的要求和作用?,第1张

冷冻切片 1、取出组织支承器,放平摆好组织,周边滴上包埋剂,速放于冷冻台上冰冻,用吸热器压住组织,至包埋剂与组织冻结成白色冰体即可切片(1~3分种)。 2、将冷冻好的组织块,夹紧于切片机持承器上,启动粗进退键,转动旋钮,将组织修平。 3、调好欲切的厚度,根据不同的组织而定,原则上是细胞密集的薄切,纤维多细胞稀的可稍为厚切,一般在5~10μm间。 4、调好防卷板。制作冰冻切片,关键在于防卷板的调节上,这就要求操作者要细心,准确地将其调较好,调校至适当的位置。切片时,以切出完整、平滑的切片为准。切好的组织在干净的玻片上黏附时顺着一个方向稍微用力轻轻一带 ,可避免组织摊片过程中皱折 ,保证组织结构的完整及切片的美观。 注:①包埋剂的选用:包埋剂是对冷冻切片质量一重要影响因素,包埋剂用量要适宜,过多或过少都会影响标本冷冻质量。常用的有三种包埋剂OCT剂、B超藕合剂以及普通胶水。B超藕合剂适用于细胞丰富质地较嫩的组织,普通胶水或 OCT剂适用于纤维丰富质地偏硬组织。 (OCT包埋剂骤冷时固化,其冷冻速度和软硬韧度与组织相近,其还具有水溶性,不影响染色等优点。) ②组织块过小:先将少量胶挤在托架上预先放在冰冻机中冷冻,约30秒钟左右待胶凝固时将小组织放上,组织周围再加一些胶,再次置于冷冻机中冷冻,这样组织被垫高,就能快速切出高质量的切片。 ③冷冻箱及冷冻头的温度高低,要根据不同的组织而定。温度过低会导致组织块过硬,切片碎裂,出现梯田状薄厚不均或空洞;反之,温度过高,组织块硬度不够 ,切片不易成形或成皱褶。数据图1供参考。 ④当切片时,如果发现冰冻过度时,可将冰冻的组织连同支承器取出来,在室温停留片刻,再行切片,或者用口中哈气,或者用大拇指按压组织块,以此来软化组织,再行切片。 另者,调高冰冻点。 ⑤用于附贴切片的载玻片,不能存放于冷冻处,于室温存放即可。因为当附贴切片时,从室温中取出的载玻片与冷冻箱中的切片有一种温度差,当温度较高的载玻片附贴上温度较低的切片时,由于两种物质间温度的差别,当它们碰撞在一起时,分子彼此间发生转移而产生了一种吸附力,使切片与载玻片牢固地附贴在一起。 如果使用冷藏的载玻片来附贴切片,由于温度相同,没有发生上述的现象。 四、常用冰冻切片苏木精—伊红染色 染色步骤:1、冰冻切片用10%甲醛固定1~5分钟,流水冲洗2分钟,蒸馏水浸洗3分钟。 2、苏木精1~2分钟。自来水快洗。 3、0。5%盐酸乙醇分色1~2秒。 蒸馏水快洗。 4、0。25%~0。5%氨水蓝化,几秒种或至组织变蓝,自来水洗30秒~1分钟。光镜下检查细胞核分色程度。 5、1%伊红1分钟。蒸馏水快洗。 6、80%、90%、95%乙醇速洗,每级数秒到十几秒。光镜下监控细胞核与细胞质量颜色对比。 7、100%乙醇2次,每次1~2分钟。 8、二甲苯2次,每次1~2分钟。中性树胶封固。 注:①结束阶段的二甲苯作用为透明,其目的是增强标本的折光率,达到光镜下清晰观察染色结果。标本内若含水分可降低其折光率,导致光镜观察细微结构不清楚的结果。 另二甲苯透明后有得于组织细胞的长久保存。 ②HE染色的水洗:整个染色过程中共5处涉及到水洗,但其洗涤程度及作用均有所不同。 苏木精染色前的水洗为蒸馏水浸洗:切忌自来水替代蒸馏水浸洗,否则苏木精染液由弱酸性(棕红色)转变为弱碱性(蓝色),导致“有色沉淀”出现与积累,致使染色结果为黑蓝色。 苏木精染色后的水洗为自来水洗,伊红染色后的水洗为蒸馏水快洗,作用是洗去未与组织相结合的染料成分,即洗去“浮色”。伊红染液为水溶性溶液,浸洗时间长会使组织的伊红颜色减退。 分色后的水洗为自来水快洗,目的是终止分色液(0。5%盐酸乙醇)对组织细胞的分色作用。 过度分色将致使染色强度减弱,影响苏木精与伊红颜色的匹配。 蓝化后的水洗为自来水冲洗,洗掉组织中多余的碱性成分(淡氨水),为伊红染色提供适宜的染色环境。 五、冰冻切片的快速染色法 ① 切片固定30秒-1分钟。 ② 水洗(10秒)。 ③ 染苏木素3-5分钟。自来水冲洗片刻。(在组织上加苏木精染液数滴,放在漂片机上的烤板上加热一分钟。染液不能干) ④分化(1%酸乙醇分化)。 ⑤ 于碱水(氨水)中返蓝20秒。 ⑥ 伊红染色10-20秒。 ⑦脱水,透明,中性树胶封固。 注:固定液的选择 A中性福尔马林溶液 B 95%乙醇 C AF(40%福尔马林10ml,95%乙醇90ml) D Carnoy(纯乙醇60ml,氯仿30ml,冰醋酸10ml) E Clzrke改良液[4](纯乙醇95ml,冰醋酸5ml) F Bouin液(饱和苦味酸水溶液75ml,甲醛水溶液 25ml,冰醋酸5ml) 6种固定液固定后的组织切片染色效果各有差异,其中C 固定液固定的切片染色效果最好,组织结构清晰,核染色鲜艳,核无明显肿胀,核浆对比度好,镜下与石蜡切片相似(图1)。 D 液、E 液、F 液染色效果均较好,结构较清晰, 核染色较鲜艳,但核有肿胀,核轮廓有些模糊。A 液染色效果较差,组织结构尚清楚,但细胞核肿胀比较明显且境界模糊不清(图2)。B 液染色效果差,核着色不良,结构模糊。 甲醛、乙醇、冰醋酸

冰冻切片焦油紫染色法的实验方法原理:冰冻切片是指将组织在冷冻状态下直接用切片机切片。它实际上是以水为包埋剂,将组织进行冰冻至坚硬后切片的。在冰冻切片前组织不经过任何化学药品处理或加热过程,大大缩短了制片时间。同时,由于此法不需要经过脱水、透明和浸蜡等步骤,因而较适合于脂肪、神经组织和一些组织化学的制片,并作为快速切片的方法应用在临床诊断。

实验材料:新鲜组织

试剂、试剂盒:H2O2酒精丙酮PBSDAPI工作液中性树上

仪器、耗材:OCT速冻架恒冷箱切片机烘箱荧光显微镜

实验步骤:

一取材

应尽可能快地采取新鲜的材料,防止组织发生死后变化。

二速冻

1、将组织块平放于软塑瓶盖或特制小盒内(直径约2cm)。

2、如组织块小可适量加OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内。

3、当盒底部接触液氮时即开始气化沸腾,此时小盒保持原位切勿浸入液氮中,大约10-20s组织即迅速冰结成块。

4、在制成冻块后,即可置入恒冷箱切片机冰冻切片。

5、若需要保存,应快速以铝箔或塑料薄膜封包,立即置入-80℃冰箱贮存备用。

三固定

1、样品托上涂一层OCT包埋胶,将速冻组织置于其上,4℃冰箱预冷5-10min让OCT胶浸透组织。

2、取下组织置于锡箔或者玻片上,样品托速冻。

3、组织置于样品托上,其上再添一层OCT胶,以完全覆盖为宜,速冻架(PE)上30min

四切片

1、恒温冰冻切片机为较理想的冰冻切片机,其基本结构是将切片机置于低温密闭室内,故切片时不受外界温度和环境影响,可连续切薄片至5-10μm。

2、切片时,低温室内温度以-15℃ ~ -20℃为宜,温度过低组织易破碎,抗卷板的位置及角度要适当,载玻片附贴组织切片,切勿上下移动。

3、切好室温放置30min后,入4℃丙酮固定5-10min,烘箱干燥20min。PBS洗5min×3。

4、进行抗原热修复,微波热修复也可,室温自然冷却。可用3%H2O2孵育5-10min,消除内源性过氧化物酶的活性。

五免疫荧光染色

1、冰冻切片室温晾干15min,可用含10%正常山羊血清的PBS室温封闭切片1小时(此步可不洗)。

2、滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液(抗体的量视组织大小而定,原则是可以均匀覆盖组织面,且保证整个过程中不会使组织干涸)。

3、将切片放在加了PBS的免疫组化湿盒,室温孵育2小时或4℃过夜。

4、第二天先将湿盒放到37℃回温1h,然后吸取片上的一抗进行回收,将切片插入到小染缸PBS冲洗。

5、滴加用PBS稀释好的二抗(避光)置于分子杂交箱中37℃孵育1小时。回收二抗,切片置于染缸内,PBS洗5min×3次。

6、滴加DAPI工作液染核,室温10-20min(工作浓度0.1%染色15min)。

7、回收DAPI,滴加5-10μl抗荧光衰减封片剂或中性树胶,用处理干净的盖玻片封片,即可到荧光显微镜或者共聚焦显微镜下观察拍照。

8、做好的切片放在切片盒内,置于4℃冰箱,可保存一周左右。

转自病理人才汇


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